自玻璃、塑料培养底物问世以来,科研人员开发了多种细胞、组织培养技术,部分技术经过改良被用于三维培养,但实际效果参差不齐。 最简单的是细胞沉淀团法:将分离得到的细胞置于试管底部,通过离心压实,再覆盖培养液[2]。该方法虽可以构建三维培养体系,但静态培养环境限制营养、氧气以及代谢废物的扩散,因此该技术并未得到广泛应用。
另一种简易方案:使用未做促贴壁处理的塑料培养瓶或培养皿培养贴壁依赖性细胞。细胞悬浮于培养基中,会随机聚集,形成体积大且形态不规则的细胞团。但大量细胞无法发生细胞间接触,进而发生凋亡死亡。此外,受静态培养体系扩散限制,大细胞团内部的细胞最终会因为营养、氧气供给不足发生坏死。
近年来,众多研究者采用三维水凝胶包埋细胞。细胞被包裹在凝胶基质内部,可自主排布,能够得到质量尚可的三维组织模型[3]。但该方法存在短板:静态培养条件限制物质传递,凝胶基质本身也会进一步阻碍扩散;同时该方案很难实现规模化放大。
还有悬滴培养法,原理和悬浮细胞聚团类似,区别在于细胞在微小液滴内聚集,能够得到形态更可控、均一的细胞球。但悬滴培养同样具备静态培养固有的扩散缺陷,并且换液操作繁琐,不适合长期培养。
旋转细胞培养系统(RCCS)是一类生物反应器技术,其构建三维培养的机制与上述所有技术完全不同。该设备属于动态系统,将细胞置于低剪切应力、类微重力环境实现悬浮(详见下文 RCCS 工作原理),贴壁依赖型细胞可顺利聚集形成三维细胞球,同时实现营养、氧气的高效物质交换[4]。和搅拌瓶反应器不同,RCCS 悬浮细胞过程不会产生损伤细胞的机械作用力[5],同时也可搭配多种支架材料使用。
RCCS 最初由美国国家航空航天局约翰逊航天中心研发,目的是模拟太空微重力环境。该设备基于回转器原理:通过单轴或双轴缓慢旋转,抵消重力的作用。NASA 研发的单轴设备称为旋转壁容器(RWV),RCCS 就是该设备的商业化产品。
“RCCS 是一套动态系统,可将细胞置于低剪切应力、类微重力的环境中实现悬浮。”
RCCS 为水平放置的圆柱腔体,腔体中心布置同轴供氧组件(图 1)。腔体内完全注满培养基;腔体旋转时,流体跟随腔壁运动,近乎整体刚体旋转。中心供氧组件固定不动,与外壁保持相同角速度,由此产生层流,剪切力维持在极低水平。

图 1:圆柱腔体水平旋转,营造类微重力环境(左);安装在电机旋转底座上的 RCCS 腔体实物(右)。腔体与旋转底座整体放置于标准加湿 CO₂培养箱内工作。
细胞置于该环境中,受重力、离心力、科里奥利力三者共同作用,保持悬浮状态(图 2)。腔体旋转过程中,细胞或细胞团不断加速,直至达到沉降终末速度;此时重力被流体剪切力、离心力、科里奥利力抵消。沉降速度主要取决于细胞聚集体尺寸,根据斯托克斯方程,沉降速度随聚集体半径的平方增大而升高[4]。 因此,随着细胞团体积增大,沉降速度会变快,需要提高 RCCS 转速,维持细胞团悬浮,避免细胞团撞击腔壁造成损伤。

图 2:颗粒 P 在流体中旋转状态下的受力示意图。重力带来的沉降速度(Vs)可以分解为径向分量(Vsr)、切向分量(Vst)以及科里奥利力分量(Vct);离心力产生向外的矢量。
腔体旋转时,细胞或细胞团加速直至沉降终末速度,重力被流体剪切力、离心力、科里奥利力平衡。沉降速度的决定性因素是细胞团大小,根据斯托克斯方程,沉降速度随半径平方增大而提升。因此细胞团增大后沉降变快,必须调高 RCCS 转速,保证细胞团悬浮,防止撞击器壁受损。
将神经干细胞包埋于三维胶原凝胶,放置于静态多孔板中培养,细胞可以分化形成神经元,并构建功能性突触。但经过一段时间后,静态体系氧气、营养扩散不足,细胞发生坏死。 将包埋后的细胞转移至 RCCS 动态培养体系(图 3),细胞不仅存活时间大幅延长(图 4),还能够构建结构复杂的类脑组织[89](图 5)。

图 3:从大鼠胚胎第 13 天的大脑皮层分离神经干 / 祖细胞,包埋于胶原,分别在静态多孔板与 RCCS 中培养。

图 4:静态培养条件下神经细胞前期增殖更快,但后期因营养氧气扩散受限大量死亡。RCCS 培养的神经细胞可以持续增殖,长时间维持细胞活性.

图 5:大鼠发育中的大脑皮层 (a):增殖的 Nestin+PCNA⁺神经祖细胞构成神经上皮层 (NE);分化后的神经元、胶质细胞分布在皮层板 (CP) 区域。RCCS 胶原细胞构建体 (b):I 层出现对应神经上皮层的 Nestin⁺、PCNA⁺细胞;II 层存在类似皮层板的 TuJ1⁺神经元细胞.
静态非贴壁培养板悬浮细胞
能够生成包含三胚层细胞的拟胚体,是胚胎干细胞的核心特征。早期制备拟胚体的方法,就是让细胞在非贴壁培养皿内自发聚集。但该方法可控性差,容易生成体积大、形态不规则的聚集体,静态扩散受限会造成聚集体中心坏死。 使用 RCCS 制备拟胚体,得到的细胞球体积更小、形态更均一,细胞存活率更高,分化效果也得到提升(图 6)。

悬滴培养依靠表面张力,将细胞悬浮在悬挂的液滴内。狭小液滴中的细胞发生聚集,形成三维细胞球。但作为静态培养技术,悬滴法同样存在物质扩散的局限。 一项胚胎干细胞向心肌细胞分化的对比研究表明:相较于悬滴培养,RCCS 培养的分化效率更高,心肌肌钙蛋白 T 表达水平更高(图 7)。

图 7:悬滴法与 RCCS 培养得到的胚胎干细胞球,置于分化培养基培养 5 天,开展心肌肌钙蛋白 T 免疫染色。
“对比悬滴培养,RCCS 可以实现更高的分化效率,目标基因表达水平更高。”
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